Перед взятием крови в совершенно чистую и сухую пробирку до метки 10 наливают децинормальный раствор соляной кислоты. Кровь берут из пальца, насасывая ее капиллярной пипеткой, приложенной к прибору до метки 20. Кончик пипетки обтирают ваткой, опускают пипетку до дна пробирки и осторожно выдувают кровь в раствор. Затем этот раствор втягивают и выдувают обратно в пробирку несколько раз, чтобы смыть оставшуюся в ней кровь. Вследствие смешивания крови с соляной кислотой, гемоглобин переходит в солянокислый гематин, и раствор приобретает коричневый цвет. Через несколько минут в этот раствор прибавляют пипеткой по каплям дестиллированную воду и помешивают стеклянной палочкой до тех пор, пока цвет раствора испытуемой крови сравняется с цветом боковых стандартных пробирок. Деление пробирки, которое будет соответствовать уровню раствора, укажет процент содержания гемоглобина в данной крови. Условно считается, что при 100% гемоглобина и 5 000 000 эритроцитов в 1 мм³ цветной показатель равен 1.

Цветной показатель вычисляется по следующей формуле:, количество гемоглобина исследуемой крови относится к нормальному количеству гемоглобина так, как количество эритроцитов данной крови к нормальному количеству эритроцитов. Например, в иседе-

дуемой крови определено 60% гемоглобина и 4 000 000  эритроцитов; цветной показатель будет равен: (60/100)/(4000000/5000000)=0,75.

Упрощенный способ определения цветного показателя: число найденного процента гемоглобина (например, 60) делят на удвоенное число сотен тысяч найденного количества эритроцитов (например, 40; 40×2- 80). 60/80=0,75

Для счета эритроцитов кровь разбавляют 3% раствором поваренной соли. В качестве разбавляющей жидкости для счета лейкоцитов пользуются 5% раствором уксусной кислоты, которая растворяет эритроциты и совершенно не изменяет лейкоцитов.

Для счета эритроцитов берут смеситель с большим резервуаром, насасывают кровь до деления 0,5 или 1 (лучше брать кровь до 0,5), обтирают кончик смесителя ваткой и сразу опускают смеситель в раствор поваренной соли и насасывают его до метки 101. Затем зажимают концы смесителя пальцами одной руки и встряхивают: бусинка в резервуаре равномерно распределяет форменные элементы.

Для счета лейкоцитов берут смеситель с меньшим раствором, насасывают кровь до метки 1, обтирают кончик смесителя ваткой и затем набирают до метки 11 раствор уксусной кислоты. По окончании насасывания раствора смеситель хорошенько встряхивают, зажав его концы.

Форменные элементы крови можно считать только под микроскопом в специальной счетной камере. Наиболее часто пользуются . счетной камерой Тома-Цейсса, состоящей из толстого предметного стекла, на которое наклеен стеклянный кружок. Дно камеры (кружка) представляет тончайшую сетку, состоящую из 16 больших квадратов, из которых каждый в свою очередь разделен на 16 маленьких квадратиков.

Каждый большой квадрат, который под микроскопом занимает почти все поле зрения, отделен от другого тремя тончайшими ли- . ниями. Сторона маленького квадратика равна ¹/₂₀ мм, а площадь, следовательно, 1/400мм² Камера окружена рамкой, которая на ОД мм выше сетки. На рамку кладется толстое шлифованное стекло.

Расстояние между сеткой и стеклом равняется 0,1 мм; следовательно, объем одного деления на сетке составит 7юХ ¹!ш ^XU 000 ^мм3

Кружок от рамки отделяется небольшим углублением, куда может вылиться излишек крови, нанесенной на сетку.

Наиболее удобной является камера Предтеченского-Ключарева. На предметном стекле прикреплены две стеклянные пластинки, служащие опорой для покровного стекла. Между ними находится средняя пластинка, плоскость которой на 0,1 мм ниже предыдущих. Эта пластинка разделена на две части поперечным желобком. На каждую половинку средней пластинки нанесено по одной сетке, состоящей из 100 больших квадратиков. Величина больших и малых квадратиков такая же, как и в камере Тома-Цейсса.

Камера, углубление, рамка и покровное стекло должны быть совершенно чисты и сухи. Прежде чем пустить разбавленную кровь на сетку, нужно снова несколько раз встряхивать смеситель, как указано выше, чтобы форменные элементы распределялись равномерно. Затем выпускают из смесителя 1—2 капли на фильтровальную бумагу и лишь после этого наносят небольшую капельку раствора на сетку. Капелька должна быть только такою объема, чтобы покрыть всю сетку. Когда капля нанесена, ее осторожно, чтобг не образовалось воздушных пузырей, покрывают покровным стеклом, котороо плотно прижимают к рамке.

В камере Предтеченского-Ключарева сначала плотно накладывается покровное стекло, а затем капля разведенной крови, висящая на конце смесителя, подносится сбоку к щели между сеткой и покровным стеклом. Жидкость равномерно распределяется между сеткой и покровным стеклом, а излишек ее стекает в поперечный желобок.

Для более или менее точного подсчета краснЬгх кровяных телец достаточно сосчитать их в 5 больших или 80 маленьких квадратиках. Счет производят в определенном порядке. Удобнее всего начинать с верхнего левого маленького квадратика. Считают все эритроциты, расположенные внутри квадратика, а затем на верхней и левой границе. После этого переходят к следующим квадратикам, и так сосчитывают количество эритроцитов во” всем большом квадрате. После подсчета эритроцитов во всем большом квадрате полученное число записывают и препарат подвигают под микроскопом на следующий большой квадрат. Таким образом сосчитывают эритроциты в 5 больших квадратах. Предположим, что в 5 больших или 80 малых квадратах мы насчитали448 эритроцитов; следовательно, в одном малом квадрате их будет 448/80. Выше было указано, что объем малого квадратика равен 4/4000 мм⁸, значит в 1 мм⁵ эритроцитов  4 000 раз больше, т. е. (448/80)*4000. Кровь была разбавлена в 200 раз, следовательно, в действительности эритроцитов должно быть в 200 раз больше, чем мы сосчитали:         (448*4000*200)/80=4480000

Это и будет число, указывающее количество красных кровяных телец в 1 мм³ исследуемой крови. Практически не нужно произвэдить всех указанных арифметических вычислений; достаточно к сосчитанному числу эритроцитов прибавить четыре нуля, чтобы получить количество эритроцитов в 1 мм³.

Для подсчета белых кровяных телец препарат готовится таким же образом. Так как лейкоцитов гораздо меньше и на большой квадрат их приходится всего 3—4, то нужно сосчитывать их в большем количестве квадратов, по крайней мере в 25.

Если пользоваться камерой Тома-Цейсса, в которой всего 16 больших квадратов, приходится производить подсчет 2 раза, а при более точном подсчете и больше.

Поэтому для счета, особенно лейкоцитов, удобнее пользоваться камерой Предтеченского-Ключарева.

Вычисление производится аналогично подсчету эритроцитов. Предположим, что в 25 больших квадратах или 400 (25×16) малых было сосчитано 74 лейкоцита. На один малый квадрат приходится 74/400 лейкоцитов. Полагая, что объем одного малого квадрата равен 1/4000 мм³ и кровь для счета лейкоцитов была разбавлена в 10 раз, получим количество лейкоцитов в 1 мм³: (74*4000*10)/400=7400

Практически следует к сосчшанному числу лейкоцитов прибавить два нуля.

Когда кровь подсохла, мазок фиксируют (закрепляют). Для фиксации удобнее всего пользоваться метиловым спиртом; можно фиксировать и денатурированным спиртом. Предметные стекла складывают попарно мазками наружу и ставят наклонно стаканчик (кюветку). Препараты держат в метиловом спирте от 3 до 5 минут, а в денатурированном 10 минут, после чего их вынимают пинцетом, промывают дестиллированной водой и ставят вертикально, чтобы дать высохнуть.

Затем приступают к окраске мазков. Наиболее простой и дающей очень хорошие результаты является краска Гимза, которая состоит из двух красок: красной — эозина (кислая краска) и синей — азура (основная краска). Перед. окраской готовую краску Гимза разбавляют дестиллиро ванной водой из расчета одна капля краски на 1 мл воды и встряхивают, чтобы получился равномерный раствор. На стекло наливают приготовленную заранее краску Гимза таким образом, чтобы она тонким слоем покрыла весь препарат, но не стекала с краев. Окрашиваются препараты приблизительно 20—25 минут, после чего цраска смывается дестиллированной водой.

Эритроциты окрашиваются эозином в розовый цвет. Лейкоциты окрашиваются по-разному, причем ядра имеют всегда сродство к основным краскам, а потому окрашиваются в темный цвет, протоплазма же окрашивается различно, в зависимости от вида лейкоцитов. Ядра лимфоцитов окрашиваются в темнофиолетовый цвет, а тонкий слой протоплазмы — в сине-голубой. Ядра моноцитов обыкновенно окрашиваются не так интенсивно, как ядра лимфоцитов, протоплазма моноцитов синевато-серого цвета. Кроме того, моноциты отличаются от лимфоцитов тем, что у первых слой протоплазмы значительно шире, ядро расположено эксцентрично и имеет неправильные контуры. В протоплазме моноцитов иногда наблюдаются включения в виде отдельных зернышек красновато-фиолетового цвета. Нейтрофилы имеют несколько ядер (сегментов), соединенных между собой очень тонкими нитями, которые окрашиваются в темнофиолетовый цвет; мелкие зернышки протоплазмы окрашиваются одинаково как эозином, так и азуром, а потому принимают фиолетовый цвет. Протоплазма нейтрофилов как бы нейтральна к обеим краскам, почему эти клетки и получили названиенейтрофилов. Зерна протоплазмы эозинофилов крупнее зерен нейтрофилов и окрашиваются исключительно эозином в яркокрасный цвет; отсюда эти клетки и получили название эозинофилов. Базофилы состоят из лопастного ядра и крупных зерен, которые красятся главным образом основными красками (азуром), а потому и ядро, и зерна окрашиваются в темнофиолетовый цвет. Кровяные пластинки (тромбоциты) окрашиваются в фиолетовый цвет.

Окрашенные мазки крови лучше всего рассматривать под микроскопом с масляной иммерсией.

При лейкоцитозе обычно наблюдается не равномерное увеличение всех видов лейкоцитов, а увеличение только одного или 2—3 видов, количество же других видов лейкоцитов может даже уменьшаться. Соотношение отдельных, элементов формулы при многих, особенно инфекционных, болезнях довольно постоянно для данной болезни. Так, для туберкулеза характерно увеличение лимфоцитов. Увеличение количества эозинофилов наблюдается при различных гельминтозах, при бронхиальной астме Малярия сопровождается увеличением числа моноцитов. При крупозном воспаления легких и всевозможных септических (гнойных) заболеваниях наблюдается нейтрофильный лейкоцитоз, т. е. лейкоцитоз за счет увеличения нейтрофилов.

Эритроциты оседают, и над ними остается прозрачный желтый слой плазмы. Ровно через час отсчитывают количество делений (в миллиметрах) сверху от уровня плазмы до уровня кровяного столбика. Для более четких результатов запись ведут каждые 15 минут, ибо интенсивность оседания все время меняется, особенно при заболеваниях. У здоровых мужчин (взрослых) РОЭ равна 8 мм в час, у женщин — 10 мм; она ускорена у детей, у беременных, при воспалительных и гнойных процессах, при острых инфекциопных заболеваниях, при туберкулезе и других заболеваниях; замедлена при желтухе и некоторых других болезнях.

Для открытия малярийных плазмодиев лучшим способом является окраска по Гимза, но препарат следует держать в краске дольше обычного — до 45—60 минут В начале лихорадки в эритроцитах находят молодые формы плазмодиев в виде небольшого комочка или кольца, состоящего из слоя протоплазмы, окрашенного в голубой цвет, и красно-фиолетового ядра Затем количество протоплазмы увеличивается, появляются отростки разной формы. По мере созревания плазмодий принимает округлую форму и заполняет почти весь эритроцит, который увеличивается в 1%—2 раза. Количество пигмента в паразите становится больше, причем он разбросан по всей клетке. После этого пигмент собирается в комочек с края клетки, а сам паразит начинает делиться: это новые молодые паразиты (мерозоиты). Каждая форма малярии имеет своего возбудителя.

Различают 3 вида плазмодия: трехдневной лихорадки, четырехдневной и тропической малярии. Молодые формы плазмодиев всех трех видов имеют форму кольца, причем при тропической малярии иногда в одном эритроците находится по два и даже по три кольца. Количество мерозоитов бывает различно: в плазмодии трехдневной лихорадки — 15—25 мерозоитов, четырехдневной — 6—8 и тропической тоже — 15—25 мерозоитов. При четырехднев- ной лихорадке зрелые формы принимают не округлую, а лентовидную форму. Если болезнь продолжается долго, то в крови появляются половые формы плазмодиев, называемые гаметами. Гаметы имеют овальную форму, свободно плавают в крови или окружены тонким слоем эритроцита.

При тропической малярии гаметы имеют своеобразную полулунную форму.

Удельный вес мочи. Средний удельный вес нормальной мочи равен 1,015—1,020. Для определения удельного веса наливают мочу в достаточно широкий и высокий цилиндр, чтобы урометр не касался его стенок и не доходил до дна. Урометр перед опусканием в мочу должен быть сухим; опускают его медленно и замечают деление на шкале, которое соответствует уровню мочи, указывающему на удельный вес. Сначала опускают в мочу урометр с делением от 1,000 до 1,025. Если шкала не доходит до уровня мочи, то значит удельный вес ее выше 1,025; тогда опускают в мочу второй урометр с делениями от 1,025 идо 1,050.

Качественное определение белка. Моча должна быть прозрачной, поэтому перед исследованием ее фильтруют (Иногда муть плохо отфильтровывается. Если это зависит от уратЬв, го мочу подогревают до исчезновения мути. При мути, вызванной бактериями, вечу вужко взболтать с инфузорной эемлей или жженой магнезией.). Затем нужно определить реакцию мочи, так как для исследования на белок она должна быть кислой.

Проба кипячением. В пробирку наливают несколько миллилитров профильтрованной кислой мочи и кипятят. Появление белых хлопьев или мути указывает на присутствие белка в моче. Если моча была нейтральной йли щелочной реакции, ее предварительно подкисляют несколькими каплями 10% раствора уксусной кислоты.

Проба Геллера. В пробирку или, еще лучше, в конический сосуд наливают 2—3 мл крепкой азотной кислоты. По стбнко сосуда пипеткой осторожно приливают мочу,чтобы ада не смешалась с кислотой. Тогда образуется два слоя: нижний, сосшцций из азотной кислоты, удельный вес которой выше удельной мочи, и верхний — из мочи. При наличии белка в моче на месте введения двух жидкостей образуется мутное белое кольцо, состоящее из свернувшегося белка. Если в моче мало белка, то белое кольцо появляется на границе двух жидкостей спустя 2—3 минуты.

Проба с сульфосалициловой кислотой. К 5—10 мл кисдой профильтрованной мочи прибавляют 5—10 капель 20% раствора сульфосалициловой кислоты. При небольшом количестве белка получается ясное помутнение, при большом — выпадает беловатый хлопьевидный осадок.

Количественное определение белка. Когда установлено наличие белка в моче, приступают к количественному его определению. Для клинических целей достаточен следующий способ. Опытным путем установлено, что образование мутного кольца на месте соприкосновения мочи с азотной кислотой через 2—3 минуты показывает, что в моче содержится 0,033°/₀₀ белка. Если белое кольцо появляется сразу, то мочу разводят до тех пор, пока кольцо образуется только через 2—3 минуты. Число разведений умножают на 0,033; полученное произведение покажет промилльное (один на тысячу) содержание белка. Предположим, что при 80-кратном разведении мутное кольцо образовалось через 2¹/₂ минуты; белка в данной моче будет 0,033 X 80 = 2_?64°/₀₀.

Качественное определение сахара. Для определения сахара чаще всего употребляется реакция Ниландера, которая проводится с одноименным реактивом. Если моча содержит белок, то профильтрованную мочу слегка подкисляют уксусной кислотой, добавляют поваренной соли и кипятят. Полученный осадок белка отфильтровывают и затем в фильтрате определяют присутствие сахара. К 5—10 мл фильтрованной мочи прибавляют 1—2 мл реактива Ниландера и кипятят 2 минуты. При наличии сахара осадок, а также вся жидкость темнеют, принимаю! коричневый, а затем и черный цвет.

Количественное определение сахара. Для определения количества сахара в моче нужно брать всю суточную мочу, так как важно знать не количество сахара в данной порции мочи, а количество его, выделенное больным в течение суток. Отдельные порции мочи, взятые в разное время суток (дневная или ночная порция), могут содержать различное количество сахара.

Сначала измеряют суточное количество мочи, а затем приступают к определению количества сахара.

Наиболее быстрым и простым способом определения количества сахара является поляризационный метод, который в настоящее время применяется почти везде. Моча должна быть кислой реакции, совершенно прозрачной и по мере возможности обесцвеченной. Ее подвергают фильтрованию, подкисляют уксусной кислотой, если она щелочная, и в случае надобности обесцвечивают. Для этого прибавляют на 50 мл мочи чайную ложку уксуснокислого свинца (свинцового сахара), после чего мочу снова фильтруют. Обесцветить мочу можно также несколькими граммами животного угля, для чего нужно взболтать мочу с углем и затем профильтровать.

Вся посуда, в которой производят растворение свинцового сахара, аолжиа быть абсолютно сухой, так же как трубка и стеклышки поляризациониого аппарата. Если посуда мокрая, то ее нужно ополоснуть дестиллированной водой, так как с водопроводной водой свинцовый сахар дает муть. При фильтровании, несмотря на все предосторожности, первые капли обычно бывают мутными, поэтому их рекомендуется не спускать в тот сосуд, который приготовлен для фильтрата. Если моча содержит белок, то нужно перед исследованием освободить мочу от него, так как белок вращает плоскость поляризации влево и своим присутствием может извратить результаты исследования.

Трубку поляризационного аппарата наливают доверху, закрывают ее приложенным круглым стеклом, надвигая стекло сбоку так, чтобы в трубке совершенно ие было пузырьков воздуха. Затем трубку завинчивают металлическим колпачком и вставляют в желобок аппарата. Если моча содержит сахар, то в трубку поляризационного аппарата ясно видно, что правая половина поля зрения будет темнее левой. Вращая винт, нужно выровнять освещение обеих половин поля зрения. Шкала укажет степень отклонения поляризованного луча, которое соответствует определенному количеству процентов сахара, что и значится па шкале.

Определение желчных пигментов. В конический стаканчик или пробирку наливают 5—10 мл профильтрованной кислой мочи, свободной от белка. Если моча щелочная, то ее предварительно подкисляют несколькими каплями 10 % уксусной кислоты. На мочу осторожно наслаивают по стенке стаканчика 1% спиртовой раствор иода. Реакция будет положительной, если на месте соприкосновения двух жидкостей образуется зеленое кольцо. 1% спиртовой раствор иода приготовляется перед началом реакции путем смешения 1 мл йодной настойки (10% спиртовой раствор иода) с 9 мл 95° алкоголя (реакция Розина).

Определение уробилина: к 10 мл мочи прибавляют столько же миллилитров хорошо взболтанного 10% спиртового раствора .хлористого цинка, затем мочу фильтруют; при рассматривании фильтрата ясно видна зеленая флюоресценция (реакция Шлезингера).

Микроскопическое исследование мочевого осадка. Мочевой осадок получают центрифугированием. После центрифугирования жидкость из стеклянной пробирки сливают, осадок достают пипеткой и выпускают на предметное стекло одну не слишком большую каплю, которую прикрывают покровным стеклом. Покровное стекло подводят к капле сбоку под углом в 45°. Когда жидкость распределится по ребру покровного стекла, его медленно опускают на каплю, чтобы под стеклом не образовалось пузырей воздуха. Препарат рассматривают нод микроскопом.

Неорганизованные осадки мочи. Мочекислые соли имеют вид мелких зернышек, окрашенных в желтый цвет. Мочевая кислота выпадает в виде кристаллов различной формы, желтобурого цветакоторые под микроскопом имеют вид ромбических табличек, брусков, бочонков, щеток, песочных часов и т. п.

Щавелевокислая известь, или оксалаты, имеет вид квадратных кристаллов, похожих на конверты.

В щелочной моче чаще встречаются фосфорнокислая аммиак- магнезия, мочекислый аммоний, аморфные фосфаты

Фосфорнокислая аммиак-магнезия имеет вид бесцветных кристаллов в форме трех-четырех- или шестиугольных призм, похожих на гробовые крышки.

Кристаллы мочекислого аммония имеют вид желтобурых шаров с отростками и шипами.

Аморфные фосфаты (фосфорнокислая известь, фосфорнокислая магнезия) по внешнему виду очень сходны с уратами: они тоже состоят из мелких зернышек и шариков, часто собранных в кучки. От уратов они отличаются тем, что бесцветны и находятся только в щелочной моче.

Организованные осадки мочи состоят из элементов, поступающих в мочу из крови, почечной ткани и мочевыводящих путей: эпителиальные клетки, с лущенные со слизистой оболочки мочевыводяпщх путей, клетки почечных канальцев, всевозможные цилиндры, эритроциты, лейкоциты, бактерии. Лейкоциты и эпителиальные клетки моче выводящих путей и наружных половых органов в небольшом количестве находятся и в нормальной моче. Клетки почечного эпителия и цилиндры наблюдаются только в патологической моче и главным образом при воспалении почек.

Эпителий мочевыводящих путей состоит из многоугольных, кругловатых больших клеток неправильной формы с одним маленьким ядром и зернистой протоплазмой. Некоторые клетки могут быть удлиненными, с отростками, откуда получают название хвостатых клеток. Большое количество их может вызвать подозрение на поражение почечных лоханок.

Клетки почечного эпителия являются клетками почечных канальцев и находятся в моче только при воспалении почек. Они немного больше лейкоцитов, многоугольной или круглой формы, имеют сравнительно большое ядро.

Лейкоциты — гнойные тельца, имеющие форму небольших зернистых шариков, которые отличаются от клеток почечного эпителия меньшей величиной и отсутствием ядра.

Эритроциты меньше лейкоцитов, слабо окрашены в желтый цвет и имеют форму дисков с вдавлением в середине. Сбоку эритроциты имеют вид бисквитов. Красные кровяные тельца, потерявшие красящее вещество, называются выщелоченными эритроцитами.

Цилиндры эпителиальные представляют собой как бы трубку из клеток слущенного эпителия мочевого канальца; клетки этих цилиндров будут несколько меньших размеров, чем отдельные клетки почечного эпителия, свободно плавающие и разбухшие в моче.

Цилиндры зернистые являются дегенеративно перерожденными эпителиальными цилиндрами, состоящими из зернышек — продуктов распада клеток почечного эпителия,

Цилиндры гиалиновые, возможно, представляют собой дальнейшее изменение зернистных цилиндров. Они бледные с неясно очерченными контурами, однородные по своему строению, часто с наложенными клетками почечного эпителия, лейкоцитами нли эритроцитами,

Цилиндры восковидные — большие, широкие и резко ограниченные с восковым блеском, имеют поперечные перохваты. Предполагают, что они образуются из перерожденных эпителиальных цилиндров, долгое время находящихся в почечных канальцах.

Микробы. Препарат всегда следует тщательно просмотреть с целью обнаружения микробов. При необходимости их окрашивают специальными красками для определения их вида.

Общая кислотность желудочного сока в норме колеблется в пределах от 40 до 60.

Определение свободной соляной кислоты. В качестве индикатора применяют диметиламидоазобензол, который в присутствии свободной соляной кислоты из желтого становится яркокрасным: берется 10 или 5 мл профильтрованного желудочного содержимого, куда прибавляется 1—2 капли диметиламидо- азобензола. Титрование продолжают до тех пор, пока красный цвет содержимого не начнет переходить в желтый. Полученное количество миллилитров умножают на 10 или 20 и получают число миллилитров децинормального раствора едкого натра, необходимого для связывания всей свободной соляной кислоты в 100 мл желудочного содержимого.

Свободной соляной кислоты в нормальном желудочном соке содержится 20—40.

Одновременное определение общей кислотности и свободной соляной кислоты. К 10 мл профильтрованного желудочного содержимого сразу прибавляют оба индикатора: фенолфталеин и диметиламидоазобензол. От присутствия последнего содержимое окрасится в красный цвет.

Титрование продолжают до перехода красного цвета в красновато-желтоватый, т. е. до момента нейтрализации свободной соляной кислоты. Число миллилитров раствора, пошедшего на связывание свободной соляной кислоты, укажет на ее количество. Затем продолжают титрование до перехода бесцветного фенолфталеина в розовый цвет. Общее количество миллилитров децинормального раствора едкого натра, необходимое для окончания всей реакции, определит общую кислотность.

Определение связанной соляной кислоты. Титруют 5 или 10 мл профильтрованного желудочного содержимого децинормальным раствором едкого натра. Индикатором служит 1% водный раствор ализарина (2—3 капли). Конец реакции определяется но появлению фиолетовой окраски в испытуемой жидкости. Ализарин реагирует со всеми кислотными соединениями, за исключением связанной соляной кислоты. Чтобы определить количество связанной соляной кислоты, нужно из числа, определяющего общую кислотность, вычесть число, полученное при титровании с ализарином.

Молочная кислота. В патологических случаях в желудочном содержимом находятся органические кислоты: молочная, уксусная и масляная. Наибольшее клиническое значение имеет присутствие молочной кислоты, которая образуется в результате молочнокислого брожения углеводов, вызванного особыми молочнокислыми палочками Боас-Опплера. Молочная кислота часто появляется при раке желудка, когда отсутствует соляная кислота.

Определяют молочную кислоту реакцией Уффельмана: к 15—20 мл 1% раствора карболовой кислоты прибавляют одну каплю полуторахлористого железа, отчего раствор приобретает темно фиолетовый цвет. Полученную смесь разбавляют дестиллированной водой до образования светлоаметистового цвета, после чего к ней прибавляют по каплям профильтрованный желудочный сок. От присутствия молочной кислоты аметистовый цвет переходит в канареечножелтый.

Кровь заметна макроскопически, если она имеется в значительном количестве. При небольшой ее примеси можно найти под микроскопом эритроциты, а кроме того, определить кровь прй помощи реакции Грегерсена или Вебера. Желудочный сок должен быть нефильтрованным. — см. Исследование кала.